Cannabis gießen: Frequenz, Menge und Runoff richtig einstellen

Nur für Erwachsene — dieser Leitfaden richtet sich an Grower ab 18 Jahren. Der Inhalt ist rein bildend und stellt keine Rechts- oder Anbauberatung dar. Azarius gibt keine Empfehlungen zum Anbau in deiner Jurisdiktion.

Bewässerungsfrequenz, Wassermenge und Runoff sind beim Cannabisanbau keine drei getrennten Entscheidungen, sondern ein Regelkreis. Substrat, Topfgröße und Pflanzenphase bestimmen gemeinsam, wie die Wurzeln gleichzeitig Sauerstoff, Nährstoffe und Feuchtigkeit bekommen. Wer diesen Regelkreis versteht, trennt das Zelt, das abliefert, vom Zelt, das stehenbleibt. Zu viel Wasser erstickt die Wurzeln und zieht Trauermücken an. Zu wenig bremst das Wachstum und sorgt für Nährstoff-Lockout. Die Antwort ist kein Gießplan — sondern ein Feedback zwischen Topfgewicht, Topfgröße, Pflanzengröße und dem, was unten wieder herauskommt (Zheng et al., 2007) (Zheng et al., 2007) (Burgel et al., 2020).

Warum Frequenz, Menge und Runoff eine einzige Entscheidung sind

Gießen ist ein physikalisches Problem, kein Kalenderproblem. Die gängige Anfängerregel »alle zwei bis drei Tage« greift zu kurz. Entscheidend ist, wie viel Wasser das Substrat bei Feldkapazität hält, wie schnell Pflanze und Verdunstung es wieder herausziehen und ob die zugeführten Salze durchgespült werden oder sich in der Wurzelzone ansammeln. Die Frequenz ergibt sich aus der Austrocknungsgeschwindigkeit. Die Menge ergibt sich aus Topfgröße und gewünschtem Runoff. Und der Runoff — die Flüssigkeit, die unten abläuft — ist dein Diagnoseinstrument: pH und EC zeigen dir, was an den Wurzeln wirklich passiert.

AZARIUS · Warum Frequenz, Menge und Runoff eine einzige Entscheidung sind

Erde, Kokos und hydroponische Systeme verhalten sich so unterschiedlich, dass eine Einheitsregel nicht funktioniert. Untersuchungen an kokosbasierten Substraten (Caplan et al., 2017, HortScience) zeigen, dass der Ertrag von Cannabis stark auf Fertigationsrate und Bewässerungsmanagement reagiert — Blütepflanzen ziehen unter identischen Bedingungen deutlich mehr Wasser als Pflanzen in der Wachstumsphase (Caplan et al., 2017) (Caplan et al., 2019).

Schritt 1 — Weiß, in welchem Substrat du tatsächlich anbaust

Das Substrat setzt alle weiteren Entscheidungen. Die erste Frage ist nicht »wie oft«, sondern »worin«.

AZARIUS · Schritt 1 — Weiß, in welchem Substrat du tatsächlich anbaust

• Erde (Torfbasis): Hält Wasser am längsten und puffert den pH. Zielbereich in der Wurzelzone: pH 6,2–6,8. Gieß, wenn die obersten 2–3 cm trocken sind und der Topf beim Anheben deutlich leichter wirkt.
• Kokos: Verhält sich eher wie Hydro als wie Erde. Ziel pH 5,8–6,2, EC je nach Phase 1,2–2,0. Kokos hält keine eigenen Nährstoffe — jede Bewässerung muss eine Düngung sein. Der volumetrische Wassergehalt bei Sättigung liegt bei rund 65 % (Athena Agriculture, technisches Bulletin 2022) (Saloner & Bernstein, 2020) (UC ANR, 2011).
• Hydroponik (DWC, RDWC, NFT, Ebbe-Flut): Die Frequenz ist kontinuierlich oder nahezu kontinuierlich. pH 5,5–6,0, EC 1,0–2,2. »Gießen« heißt hier Nährlösungsmanagement, nicht Kanne über den Topf kippen.

Wenn du nicht sicher weißt, welches dieser Substrate du hast, klär das zuerst. Eine Regel, die im 5-Liter-Erdtopf funktioniert, ertränkt einen 1-Liter-Kokos-Sämling und verhungert gleichzeitig eine 15-Liter-Blütepflanze in Kokos.

Schritt 2 — Passe die Menge an die Topfgröße an, nicht an die Pflanzengröße

Als Arbeitsregel: pro Gießgang 10–20 % des Topfvolumens zuführen, und davon 10–20 % als Runoff anstreben. Das deckt die meisten europäischen Home-Grows in Erde und Kokos ab (UC ANR, 2011).

AZARIUS · Schritt 2 — Passe die Menge an die Topfgröße an, nicht an die Pflanzengröße

In Kokos gießt du kleinere Mengen häufiger — manche Grower bewässern in der späten Blüte drei- bis sechsmal täglich mit geringem Volumen. In Erde größere Mengen seltener. So oder so: Die Runoff-Menge ist wichtiger als die zugeführte Menge. Kein Runoff bedeutet über Wochen Salzanreicherung. Zu viel Runoff bedeutet verschwendeten Dünger und nassen Boden.

Schritt 3 — Setze die Frequenz über das Topfgewicht, nicht über die Uhr

Heb den Topf hoch — das ist die Methode. Gesättigte Töpfe sind schwer, trockene spürbar leicht. Innerhalb einer Woche hast du das Gefühl für »braucht jetzt Wasser« und »hält noch«.

AZARIUS · Schritt 3 — Setze die Frequenz über das Topfgewicht, nicht über die Uhr

• Sämlinge (Woche 1–2): In Erde alle 2–4 Tage, in Kokos täglich bis zweimal täglich in winzigen Mengen (50–100 ml rund um den Stängel). Ertränken tötet mehr Sämlinge als alles andere.
• Wachstum (Woche 3–6 Photoperiode, Woche 2–4 Autoflower): In Erde alle 1–3 Tage, in Kokos täglich. Die Pflanze verdoppelt sich wöchentlich und der Wasserbedarf steigt rapide.
• Frühe Blüte (Stretch, Woche 1–3 im 12/12): In Erde alle 1–2 Tage, in Kokos 1–3 mal täglich. Die Transpiration erreicht ihren Höhepunkt, sobald sich das Blätterdach schließt (Burgel et al., 2020).
• Mittlere bis späte Blüte: Größter Verbrauch. Ein 15-Liter-Erdtopf mit ausgewachsener Pflanze unter 400 W LED trinkt in einem warmen Zelt 2–3 Liter pro Tag.

Ehrliche Einschränkung: Diese Bereiche sind Anhaltspunkte, keine Rezepte. Das Umgebungsklima macht die halbe Rechnung aus. Höhere Temperaturen, niedrigere Luftfeuchte, stärkere PPFD und bessere Luftzirkulation beschleunigen die Transpiration alle. Eine Pflanze bei 900 PPFD und VPD 1,3 kPa trinkt deutlich mehr als dieselbe Pflanze bei 500 PPFD und 0,9 kPa — im direkten Vergleich im selben Zelt kann der Unterschied das Doppelte betragen (Fluence, 2021).

Schritt 4 — Nutze den Runoff als Diagnose, nicht nur als Abfluss

Runoff sind Daten, kein Abwasser. Einmal pro Woche (Erde) oder alle paar Düngungen (Kokos) fängst du den Ablauf in einer sauberen Schale auf und misst zwei Dinge:

AZARIUS · Schritt 4 — Nutze den Runoff als Diagnose, nicht nur als Abfluss

1. pH: Vergleiche Runoff-pH mit Input-pH. Wenn du bei 6,2 gegossen hast und der Runoff kommt bei 5,4 raus, versauert die Wurzelzone — Calcium- und Magnesium-Lockout zeichnet sich ab (Shiponi & Bernstein, 2021).
2. EC: Vergleiche Runoff-EC mit Input-EC. Deutlich höherer Runoff-EC = Salze sammeln sich an, Zeit zum Spülen oder die Düngerkonzentration senken. Deutlich niedrigerer Runoff-EC = die Pflanze trinkt kräftig, du kannst stärker düngen (Saloner & Bernstein, 2020).

Das ist die nützlichste Gewohnheit, die ein Grower aufbauen kann. Ein günstiges Kombi-pH/EC-Messgerät hat sich beim ersten erkannten Lockout bereits bezahlt gemacht — vor den ersten Krallblättern. Lohnt sich die kleine Investition vor dem nächsten Grow.

Schritt 5 — Vermeide die fünf Fehler, die die meisten ersten Grows ruinieren

Fehlschläge beim ersten Grow gehen fast immer auf dieselbe kurze Liste zurück:

AZARIUS · Schritt 5 — Vermeide die fünf Fehler, die die meisten ersten Grows ruinieren

1. Nach festem Zeitplan gießen, egal wie schwer der Topf ist. Ein Sämling in Woche 2 braucht nicht das, was eine Blütepflanze in Woche 6 braucht.
2. Zu große Töpfe für kleine Pflanzen. Ein Sämling in einem 15-Liter-Topf sitzt eine Woche lang in nasser Erde. Fang mit 0,5–1 L an und topfe um. Direkt in den Endtopf geht nur bei Autoflowern und dann mit sehr kleinen Mengen direkt am Stängel.
3. Runoff-EC und pH nie messen. Du fliegst blind. Das zuerst abstellen.
4. Wochenlang ohne Runoff gießen. Salzanreicherung ist kumulativ und unsichtbar — bis sie es nicht mehr ist (Shiponi & Bernstein, 2021).
5. Kaltes Wasser direkt aus der Leitung. Ziel: 18–22 °C in der Wurzelzone. Kaltes Wasser schockt die Wurzeln und bremst die Aufnahme. Deutsches Leitungswasser liegt im Winter bei rund 8–10 °C.

Deutsches Leitungswasser ist für Cannabis meist in Ordnung (mittelharte Bereiche), aber lass es 24 Stunden stehen oder nutze einen Dechlorator, wenn deine Versorgung stark gechlort ist. Umkehrosmosewasser brauchst du eigentlich nur, wenn dein Leitungs-EC über ~0,6 liegt.

Eine Anmerkung zum Flushen

Flushen bedeutet, klares, pH-angepasstes Wasser durchs Substrat laufen zu lassen, um angesammelte Salze auszuspülen. Sinnvoll ist das, wenn der Runoff-EC dauerhaft zu hoch läuft oder ein Lockout mitten im Grow zurückgesetzt werden muss. Ob eine zweiwöchige Schlussspülung vor der Ernte die Qualität des Curings spürbar verbessert, ist umstritten: Eine Studie von Stenerson & Oden (2020) fand keinen signifikanten Unterschied im Cannabinoid- oder Aschegehalt zwischen gespülten und ungespülten Pflanzen bei Flush-Perioden von 0, 7 und 14 Tagen. Grower berichten dennoch von subjektiven Geschmacksunterschieden. Sauberes Trocknen und Curen macht so oder so mehr aus.

AZARIUS · Eine Anmerkung zum Flushen

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Referenzen

• Caplan, D., Dixon, M., & Zheng, Y. (2017). Optimal rate of organic fertilizer during the vegetative-stage for cannabis grown in two coir-based substrates. HortScience, 52(9), 1307–1312.
• Athena Agriculture (2022). Coco substrate VWC and fertigation technical bulletin.
• Stenerson, K. K., & Oden, G. (2020). The impact of flushing on cannabinoid, terpene, and nutrient content of dried cannabis flower. Cannabis Science and Technology, 3(8).
• European Union Drugs Agency (EUDA, vormals EMCDDA). Cannabis drug profile, aktualisiert 2024.

Zuletzt aktualisiert: April 2026

Literatur

1. Caplan, D., Dixon, M., & Zheng, Y. (2017). Optimal rate of organic fertilizer during the vegetative-stage for cannabis grown in two coir-based substrates. HortScience, 52(9), 1307-1312. https://doi.org/10.21273/HORTSCI11903-17.
2. Caplan, D., Dixon, M., & Zheng, Y. (2019). Increasing inflorescence dry weight and cannabinoid content in medical cannabis using controlled drought stress. HortScience, 54(5), 964-969. https://doi.org/10.21273/HORTSCI13510-18.
3. Zheng, Y., Wang, L., & Dixon, M. (2007). An upper limit for elevated root zone dissolved oxygen concentration for tomato. Scientia Horticulturae, 113, 162-168. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2007.03.011.
4. Burgel, L., Hartung, J., Schibano, D., & Graeff-Hönninger, S. (2020). Impact of different phytohormones on morphology, yield and cannabinoid content of Cannabis sativa L.. Plants, 9(6), 725. https://doi.org/10.3390/plants9060725.
5. Saloner, A. & Bernstein, N. (2020). Response of medical cannabis (Cannabis sativa L.) to nitrogen supply under long photoperiod. Frontiers in Plant Science, 11, 572293. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.572293.
6. Shiponi, S. & Bernstein, N. (2021). The highs and lows of P supply in medical cannabis: Effects on cannabinoids, the ionome, and morpho-physiology. Frontiers in Plant Science, 12, 657323. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.657323.
7. Fulton, A., Schwankl, L., Lynn, K., Lampinen, B., Edstrom, J., & Prichard, T. (2011). Using EM and VERIS technology to assess land suitability for orchard and vineyard development. University of California Agriculture and Natural Resources, Publication 8498. https://anrcatalog.ucanr.edu/pdf/8498.pdf.
8. Fluence Bioengineering (2021). Cannabis cultivation guide: Best practices for growing with LED technology. Fluence Technical White Paper. https://fluence.science/science-articles/horticulture-lighting-metrics/.